Современная электронная библиотека ModernLib.Net

Острые респиратоные заболевания крупно-рогатого скота

ModernLib.Net / Биология / Игорь Рубинский / Острые респиратоные заболевания крупно-рогатого скота - Чтение (Ознакомительный отрывок) (стр. 4)
Автор: Игорь Рубинский
Жанр: Биология

 

 


? эффективность веществ, введенных безыгольным способом, не уступает, а иногда превосходит их активность при игольном введении;

? уменьшение объема и дозы применяемого препарата при сохранении терапевтического эффекта;

? ? все жидкие биологические вещества, предназначенные для введения через иглу, пригодны для безыгольного способа применения;

? сохранение стерильности инъецируемого препарата;

? практически исключена возможность перезаражения прививаемых животных;

? высокая производительность, надежность и удобство введения препарата, по сравнению с другими методами иммунизации;

? экономичность способа.

Недостатки безыгольного введения:

? инъектор невозможно использовать для внутривенных инъекций;

? инъектор требует специального ухода;

? при работе с ним необходима специальная подготовка и строгое соблюдение правил эксплуатации (несрблюдение последних может привести к осложнениям, например порезам кожи).

На основании вышеперечисленных особенностей можно сделать вывод, что безыгольный способ является самостоятельным путем введения лекарственных препаратов в организм. Как один из способов массового ведения лекарственных и вакцинных препаратов его широко изучали в разных областях практического здравоохранения в 1960–1980 годах.

В ветеринарии интерес к безыгольному методу вакцинации как компоненту общей системы эпизоотологческих мероприятий повысился в середине 90-х годов.

Возможность, целесообразность и условия применения безыгольных инъекторв для массовой иммунизации животных показаны в работах последних лет.

Есть данные о том, что при применении ассоциированных вакцинных препаратов целесообразно снижать дозу вакцин в 5-10 раз.

В связи с указанным вакциной Комбовак вакцинировали 450 глубокостельных коров и 428 телят; Комбовак-Р – вакцинировали 479 глубокостельных коров и 439 телят; Комбовак и эмульгированная вакцинапротив пастереллеза КРС, буйволов и овец – 480 глубокостельных коров и 520 телят соответственно. Содержание сывороточных вирусоспецифических антител определяли у животных всех опытных групп перед каждым введением вакцины и через 21–30 дней после второй вакцинации.

Были подобраны 3 группы коров 2–3 летнего возраста, находящихся в одинаковых условиях содержания. Первая группа животных: вакцинировали инактивированной комбинированной вакциной “Комбовак” против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи. Коровам второй группы применили вакцину “Комбовак-Р” инактивированная комбинированная против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят, пастерелеза (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи. Коров третьей группы иммунизировали вакциной “Комбовак” против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи и “Эмульгированной вакциной против пастереллеза КРС, буйволов и овец” (ФГУП Армавирская биофабрика, Краснодарский край), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 3 мл подкожно в область средней трети шеи.

Напряженность посвакцинального иммунитета оценивалась исследованием сыворотки крови в реакции нейтрализации (РН), реакции торможения гемагглютинации (РТГА), реакции агглютинации (РА) с антигенами ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллеза. Исследование проводили через 14 дней после первого и второго введения вакцин. Интервал между последующими исследованиями составлял 14 дней и далее – 1 месяц.

Постановку и учет реакции проводили по стандартной методике, титры антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС выражали в обратных величинах. Относительное содержание вирусоспецифических антител в исследуемых пробах международных единицах по отношению к положительному контролю. Результаты обрабатывали статистически общепринятыми методами.

Предварительно провели эпизоотологические и серологические обследования животных конкретных хозяйств. Полученные данные свидетельствовали о широкой циркуляции вирусов в стадах крупного рогатого скота. Так у 61,6 % животных обнаружили антитела к вирусу ИРТ КРС, у 27,2 % – к вирусу ПГ-3 КРС и 72,1 % к вирусу ВД-БС КРС. Во всех четырех обследованных хозяйствах у 27,0-59,0 % животных выявили нейтрализующие антитела к двум и более вирусам, а также обнаружили антитела к пастереллезу. Перед проведением опытов заболеваемость телят респираторными болезнями в среднем по хозяйствам за год составляла – 43,0-71,0 % от общего количества полученных телят, гибель и выбраковка – 9,2 и 7,9 % соответственно. В каждом хозяйстве опыты проводили на фермах с наиболее высоким процентом заболеваемости, гибели и выбраковки молодняка.

Вакциной Комбовак вакцинировали 450 глубокостельных коров и 428 телят; Комбовак-Р – вакцинировали 479 глубокостельных коров и 439 телят; Комбовак и эмульгированная вакцинапротив пастереллеза КРС, буйволов и овец – 480 глубокостельных коров и 520 телят соответственно.

Содержание сывороточных вирусоспецифических антител определяли у животных всех опытных групп перед каждым введением вакцины и через 21–30 дней после второй вакцинации (табл. 9-10).


Таблица 9 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови коров до вакцинации



Таблица 10 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови коров к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 после вакцинации вакцинами “Комбовак”, “Комбовак-Р”



Как видно из таблицы все прививаемые коровы до вакцинации имели низкий уровень гуморальных антител к ИРТ – 2,7±0,18, ВД-БС – 2,5±0,16, ПГ-3 – 4,7±0,32, пастереллам 1,7±0,16, что говорит о их возможности инфицирования возбудителями острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота.

У иммунизированных животных отмечаем сероконверсию по всем компонентам вакцин через 14–21 день после введения (разница достоверна при Р < 0.05).

Среднестатистический титр антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу составил 6,8±0,20, 7,1±0,11, 9,8±0,17, 7,5±0,26 lg2 соответственно.

У телят рожденных от привитых коров, определяли уровень гуморальных антител в возрасте 10–28 дней, а затем вводили в хозяйствах неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС вакцину Комбовак; в хозяйствах неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастерллезу вакцину Комбовак-Р, телятам в возрасте 28–30 дней

У телят в возрасте 10–28 дней средний титр антител в сыворотке крови к вирусу ИРТ КРС составил 3,37±0,27, к вирусу ВД-БС КРС – 3,01±0,21, к вирусу ПГ-3 КРС – 1,65±0,12, пастереллезу – 1,04±0,13 lg2 (табл. 11–12).


Таблица 11 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови телят, рожденных от привитых коров к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу до вакцинации в возрасте 10–28 дней



У телят в возрасте 10–28 дней средний титр антител в сыворотке крови к вирусу ИРТ КРС составил 3,37±0,27, к вирусу ВД-БС КРС – 3,01±0,21, к вирусу ПГ-3 КРС – 1,65±0,12, пастереллезу – 1,04±0,13 lg2. В возрасте 28–30 дней вводили вакцину Комбовак или Комбовак-Р, в зависимости от неблагополучия хозяйства по ОРЗ КРС. У 21,0 % иммунизированных телят в возрасте 28–30 дней проявлялась поствакцинальная реакция в виде повышения температуры тела до 40?С, гиперемии конъюнктивы, слезотечения. Указанные признаки исчезали в течение 5–7 дней. После иммунизации у телят в возрасте 28–30 дней уровень антител и антигемаглютининов ко всем четырем антигенам повышался.


Таблица 12 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов у телят к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу после введения вакцин Комбовак и Комбовак-Р



Из представленных данных видно, что в момент введения инактивированных вакцин Комбовак и Комбовак-Р у телят в возрасте 28–30 дней титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютенинов к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу составили 3,31±0,2, 3,02±0,19, 1,6±0,1, 1,9±0,2; через 30 дней после вакцинации: 4,2±0,27, 3,8±0,27, 2,8±0,28, 2,7±0,27 соответственно; через 60 дней к вирусу ИРТ КРС 4,8±0,17, ВД-БС КРС – 4,1±016, ПГ-3 КРС – 5,8±0,21, пастереллезу – 3,2±0,1; через 90 дней 4,5±0,25, 3,8±0,21, 5,6±0,17, 2,9±0,21 соответственно; через 120 дней – 3,9±0,16, 3,6±0,17, 4,1±0,21, 2,7±06; через 150 дней – 3,3±0,21, 3,1±0,18, 3,8±0,17, 2,5±0,14 соответственно. Разница во всех случаях достоверна (Р < 0,05).

Выявленные титры антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу сохранялись на постоянном уровне в течение 3-х месяцев (до 3-х месяцев), затем понижались, что говорит о необходимости проведения вакцинопрофилактики с 3-х месячного возраста телят против ОРЗ КРС.

Исследование проб сыворотки крови коров и телят до 30-ти дневного возраста из хозяйств, неблагополучных по ОРЗ КРС, где вакцинация проводилась вакциной Комбовак и эмульгированной вакциной против пастереллеза КРС, буйволов и овец, показала, что в среднем до 47 % из них имеют низкий титр антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 – 1,7±0,61, 1,5±1,41, 1,9±0,16 lg2 соответственно, а к пастереллезу в низких титрах (1,8±0,16 lg2). Исследование молозива отелившихся коров показало, что уровень иммуноглобулинов основных классов в нем значительно ниже нормы. Что обуславливает его низкую защитную функцию. Телята без колостральных антител или содержащие их в низких титрах менее защищены от контакта с полевым вирусом.

В связи с уменьшением уровня антител каждые три месяца, в возрасте 6 месяцев телят повторно иммунизировали вакциной Комбовак или Комбовак-Р, при этом уровень антител к четырем антителам контролировали в течение 150 дней. Сроки последующей иммунизации были определены перед случным периодом в возрасте 12–14 месяцев с использованием вакцин Комбовак и Комбовак-Р, однократно. При этом у 100 % привитых животных отмечали напряженный иммунитет по всем четырем антителам в течение 6 месяцев (срок наблюдения). Перед отелом нетелей иммунизировали по схеме, разработанной для коров.

При внедрении комплексной системы оздоровительных мероприятий объем диагностических исследований с целью определения напряженности иммунитета у привитых животных составил по годам: 2004 год – 2721 проба сыворотки крови, при этом средний титр антител к вирусу ИРТ составил 2,07±0,04, ВД-БС – 3,2±0,02, ПГ-3 – 3,4±0,01 lg2; в 2005 году – исследовали 1786 проб сыворотки крови, выявили титры антител в среднем к вирусу ИРТ – 3,2±0,03, ВД-БС – 3,5±0,01, ПГ-3 – 3,9±0,02 lg2. В 2006 году исследовали 2301 пробу сыворотки крови, при установленном уровне антител к вирусу ИРТ – 4,2±0,04, ВД-БС – 3,9±0,01, ПГ-3 – 4,2±0,04, пастереллезу – 3,9±0,01 lg2. В 2007 году – 492 пробы сыворотки крови при уровне антител к вирусу ИРТ – 5,2±0,01, ВД-БС – 5,7±0,04, ПГ-3 – 64,2±0,01, пастереллезу – 4,9±0,02 lg2. Разница между средними величинами титров вируснейтрализующих и антигемаглютинирующих антител по годам достоверна. Титры вируснейтрализующих антител у животных из хозяйств, где не использовалась данная система вакцинации, в среднем, не превышают 1,0 ±0,02 lg2.

При анализе картографических данных видно, что уровень титров вируснейтрализующих антител у животных к вирусам ИРТ, ВД-БС увеличивается к 2007 году, в районах Свердловской области, где внедрена схема вакцинации и достигает 80-100 % по сравнению с 2004 годом.

Таким образом, вакцинация животных, проводимая в течение трех лет, привела к увеличению количества телят, имеющих титры антител к вирусу ИРТ КРС – 99,8 %, ВД-БС КРС – 97,1 %, ПГ-3 КРС – 100 %, что на 11,3 %, 28,2 % и 10 %, соответственно, выше, чем в 2004 году.

Количество телят, не имеющих антитела к этим вирусам, составило соответственно 1; 2; 2,8; и 0 %. Разница между средними значениями титров специфических антител была достоверной при Р < 0,05.

Серологические исследования, проведенные в 2004–2007 гг. в 35 хозяйствах области, где была внедрена система специфической профилактики, показали, что после введения телятам, рожденным от иммунизированных матерей, инактивированными вакцинами у них вырабатывается достаточно напряженный гуморальный (от 65 до 100 %) и напряженный гуморальный иммунитет. Титры вируснейтрализующих антител в течение срока наблюдения достоверно повышались от 1,78 до 5,3±0,74 lg2 и выше.

Практически во всех обследованных хозяйствах у привитых животных отмечается достоверная сероконверсия (Р < 0,05 между значениями титров антител в первый и последующие годы вакцинации).

На основании полученных результатов было сделано предположение, что усовершенствование на этой основе схемы специфической профилактики ОРЗ КРС, обеспечивает формирование напряженного иммунитета у крупного рогатого скота при вакцинации с учетом возраста.

При этом разница между средними значениями титров специфических антител была достоверной при Р < 0,05.

В таблице 13 представлены данные о наличии сероконверсии у иммунизированных телят после внедрения усовершенствованной схемы вакцинации в течение 2005–2006 гг. (по данным 9 хозяйств). Установлено, что после введения телятам, рожденным от иммунизированных коров-матерей, инактивированными вакцинами Комбовак и Комбовак-Р у них вырабатывается достаточно напряженный гуморальный иммунитет.

Таким образом, усовершенствование схемы вакцинации против ОРЗ КРС оказались достаточно эффективными (табл. 13–15) (Приложения)

<p>1.14.2. Повышение эффективности средств специфической профилактики острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота с помощью иммунокорректоров растительного происхождения</p>

Один из основных критериев оценки экономической эффективности применения средств специфической профилактики инфекционных болезней наряду с напряженностью иммунитета, отсутствием заболеваемости и падежа – это расход препарата. В практике борьбы с ОРЗ крупного рогатого скота ситуация, при которой приходится вводить дополнительные вакцинациив связи с низкими титрами антител или их полным отсутствием у отдельных животных, возникает довольно часто. Причиной тому сбои в работе отдельных элементов иммунной системы.

Учитывая это целью наших исследований явилось изучение эффективности применения вакцины инактивированной комбинированной против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота– и коронавирусной болезни телят (“Комбовак”) в сочетании с иммуномодулирующими средствами с последующей оценкой иммунного статуса привитых животных.

Исследования проведены на 180 быках черно-пестрой породы 6-8-месячного возраста, разделенных на три равные группы в условиях сельскохозяйственного предприятия Челябинской области, неблагополучного по ОРВИ крупного рогатого скота.

Для иммунизации животных использовали вакцину “Комбовак” согласно наставлению по её применению в сочетании с растительными иммуномодуляторами Видор, Витадаптин. Оптимальную дозу иммуномодуляторов Видор 5,0 см3/гол подкожно, Витадаптин 10,0 см3/гол внутримышечно за 24 часа до введения вакцины “Комбовак”.

У подопытных животных исследовали кровь до проведения вакцинации и в последующем через 14 и 28 суток. Определение количества эритроцитов и лейкоцитов осуществляли общепринятыми методами. Специфические антитела против ИРТ, парагриппа-3, вирусной диареи определяли РНГА, ИФА, РТГА. Результаты гематологических исследований представлены в табл. 16.


Таблица 13 – Сероконверсия к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС у телят после иммунизации вакцинами Комбовак и Комбовак-Р в хозяйствах Свердловской области



Таблица 14 – Методологическая схема № 1 специальных профилактических мероприятий по инфекционному ринотрахеиту, вирусной диарее – болезни слизистых, парагриппу типа 3, хламидиозу крупного рогатого скота




Таблица 15 – Схема № 2 специальных профилактических мероприятий по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, хламидиозу, пастереллезу КРС



Таблица 16 – Гематологические показатели опытных животных



Результаты, представленные в таблице 1 свидетельствуют, что у животных, привитых вакциной “Комбовак” в сочетании с иммуномодуляторами изменения общего количества эритроцитов в крови были незначительными. В то же время, количество лейкоцитов у быков, иммунизированных одной вакциной, к 28 дню опыта уменьшилось на 12,8 %. У животных иммунизированных вакциной “Комбовак” в сочетании с препаратами Видор, Витадаптин на 28 сутки после вакцинации в крови регистрировали достоверное увеличение количества лейкоцитов 21,31 и 22,95 % соответственно.

Анализ результатов серологических исследований показал, что специфические антитела против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи после иммунизации вакциной “Комбовак” в сочетании с препаратами Видор, Витадаптин выявляются на 14 сутки и достигали максимальных значений к 28 дню (рис. 5).



Рисунок 5 – Средний титр вируснейтрализующих антител в пробах сыворотки крови быков, lg2


При этом уровень антител у животных опытных групп варьировал: при ИРТ – от 3,10±0,19 до 4,20±0,14; ПГ-3 – 1,61±0,14 – 4,68±1,14; ВД-БС – 2,18±0,31 – 2,63±0,18 и в контроле – от 3,1±0,13 – 2,21±0,14; 2,64±0,11 – 1,61±0,13; 2,16±0,14 – 2,01±0,14 lg2 соответственно.

Таким образом, результаты проведенных исследований показали, что вакцинация животных вакциной “Комбовак” в комплексе с применением иммуностимулирующими препаратов Видор и Витадаптин сопровождается значительным повышением общего количества лейкоцитов, более интенсивной выработкой специфических антител по сравнению с показателями у животных, иммунизированных одной вакциной.

<p>1.14.3. Комплексная система профилактических мероприятий при ОРЗ крупного рогатого скота</p>

На основании анализа и результатов эпизоотологической ситуации на Урале, определения эффективности специфической профилактики была разработана комплексная система противоэпизоотических мероприятий (табл. 17).

Комплексная система оздоровительных и профилактических мероприятий при ОРЗ КРС включает проведение организационных и специальных мероприятий, направленных на ликвидацию респираторных инфекций среди поголовья крупного рогатого скота. Основные звенья ее – своевременная вакцинация, соблюдение ветеринарных и санитарных мероприятий, проведение аэрозольной дезинфекции, введения молодняку сыворотки реконвалесцентов крупного рогатого скота и сыворотки против паслереллеза. Внедрение системы обеспечило снижение заболеваемости в хозяйствах Свердловской области неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, пастереллеза КРС. Разработанная ранее система мероприятий была ориентирована на острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота и хламидиоз. В настоящее время в Уральском регионе существует проблема смешанных вирусных и бактериальных инфекций крупного рогатого скота.

Для вакцинации против острых респираторных вирусных инфекций в хозяйствах благополучных по пастереллезу крупного рогатого скота рекомендовали применить инактивированную комбинированную вакцину “Комбовак” против ИРТ, ВД, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва); в хозяйствах, имеющих неблагополучие по пастереллезу применять “Комбовак-Р” – инактивированную комбинированную вакцину против ИРТ, ВД, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни, пастереллеза телят (НПО “Нарвак”, г. Москва). Вакцинацию животных проводить внутрикожным методом, строго в указанные возрастные периоды. Обязательным условие оздоровительных мероприятий остается исследование напряженности иммунитета к ОРВИ КРС, пастереллезу каждые 30 дней у телят до достижения возраста 6 месяцев, коров и нетелей исследовать на напряженность иммунитета 2 раза в год.

Контроль напряженности иммунитета в стаде дает возможность оценивать эффективность проводимой вакцинации и своевременной корректировки мер, направленных на оздоровление хозяйств от острых респираторных заболеваний. Также необходимым условием эффективности профилактических мероприятий является соблюдение ветеринарно-санитарных мероприятий.

<p>1.14.4. Мероприятия по повышению резистентности, оздоровлению сухостойных коров с целью получения крепкого приплода и сокращения частоты послеродовых осложнений</p>

Повышение продуктивности животных и эффективности различных схем профилактики инфекционных болезней невозможно без правильного кормления скота. Зачастую, используемые рационы дефицитны по витаминам, имеют избыток белка, низкое качество в результате чего происходят серьёзные отклонения в обмене веществ. Нарушения обмена веществ препятствуют реализации генетического потенциала, снижают воспроизводительную функцию, сокращают сроки хозяйственного использования коров и т. д.


Таблица 17

Система оздоровительных и профилактических мероприятий при ОРЗ крупного рогатого скота



Профилактические мероприятия по коррекции обмена веществ у крупного рогатого скота должны проводиться, в первую очередь, для коров в сухостойный период. С помощью правильно подобранных лекарственных средств и кормовых добавок можно существенно повлиять на качество приплода и надои в последующую лактацию, предотвратить нарушения родовой деятельности, возникновение послеродовых осложнений, повысить оплодотворяемость коров, получить крепкий, жизнеспособный приплод, способный противовстоять влиянию неблагоприятных факторов окружающей среды.

В последние годы для нормализации обменных процессов в организме животных большое внимание отводится лекарственным средствам и кормовым добавкам природного происхождения, обладающим высокой биологической доступностью и усвояемостью. Немаловажным является их экологичность, отсутствие каких-либо побочных эффектов и привыкания.

Для внедрения в практику нами была разработана профилактическая схема комплексного применения Гермивита, Витадаптина (ЗАО “Розовый лотос”) и Гувитана-С (ООО “Ариадна”).

С целью оценки эффективности профилактической схемы на обмен веществ и качество получаемого от него приплода в условиях ООО “Совхоз Береговой”, Каслинского района, Челябинской области был проведён производственный эксперимент. Для этого среди сухостойных коров были сформированы две группы – опытная и контрольная (по 140 голов в каждой). Предварительно было проведено клиническое обследование животных.

Схема дачи Гермивита, Гувитана-С и обработок сухостойных коров Витадаптином представлена в таблице 18.


Таблица 18 – Схема производственного эксперимента



Все животные находились в равных условиях (влажность, загазованность, температурный режим, уход) и получали одинаковые корма.

Наблюдение за животными обеих групп вели с первого дня после перевода их в группу сухостоя до момента плодотворного осеменения. При этом учитывались общее состояние животных, частота случаев возникновения послеродовых осложнений, гинекологических заболеваний, масса новорожденных телят, их заболеваемость и сохранность в течение первых 30 дней жизни. Кроме того, проведено биохимическое исследование крови. Её брали у 10 коров каждой группы дважды – через 30 дней от начала опыта и за 3–5 дней до отёла. Полученные результаты представлены на рисунке 6 и в таблицах 19–20.

Анализ результатов биохимического исследования сыворотки крови показывает, что дача сухостойным коровам Гермивита, раствора Гувитана-С, обработка животных Витадаптином способствует активизации деятельности всех систем организма и стимулирует обмен веществ. Свидетельством тому являются рост (опыт в сравнении с контролем) содержания каротина, кальция, фосфора, сахара, альбумина, резервной щелочности в среднем на 51,36; 14,56; 14,98; 13,38; 21,75 и 14,64 % соответственно. Понижение содержания в сыворотке общего белка (2,27 %) на фоне увеличения концентрации альбуминов (21,75 %) клинически можно рассматривать, как следствие нормализации деятельности печени, более качественного использования протеина корма.



Рис. 6 – Результаты биохимического исследования крови


Наблюдениями за поведением животных установлено, что коровы опытной группы были более активными (во время прогулок), лучше поедали задаваемые корма. Частота возникновения послеродовых осложнений и гинекологических заболеваний них была в три раза ниже, чем у коров группы контроля. При этом, средняя масса телят при рождении у матерей опытной группы была выше (в среднем на 10,33±0,45 кг).


Таблица 19 – Частота возникновения послеродовых осложнений (%) и величина последующего сервис-периода (дн.)




Таблица 20 – Масса телят при рождении от матерей опытной и контрольной групп, их заболеваемость и сохранность в течение 30 дней



Последующее наблюдение за животными, участвующими в эксперименте установлено, что применение Гермивита, Гувитана-С и Витадаптина способствует сокращению продолжительности сервис-периода. У коров опытной группы он был на 41,49 дня короче, чем в контроле.

Различий в сохранности телят до 30-дневного возраста от матерей обеих групп не установлено. Но как показали данные ежемесячного взвешивания молодняка, при равных условиях, величина среднесуточного прироста массы тела у телят, полученных от животных опытной группы, была на 70 г выше, чем в контроле. Кроме того, установлено, что после вакцинации против ОРВИ, число телят от матерей, прокормленных Гермивитом, и обработанных Витадаптином, нуждающихся в тертьей, дополнительной иммунизации по причине недостаточной напряженности иммунитета, сократилось на 28,20 %.

В результате снижения частоты случаев возникновения послеродовых осложнений, гинекологических заболеваний и заболеваемости новорожденных телят сократились затраты на лечение. Экономия только за счёт снижения расхода лекарственных средств по родильному отделению, профилакторию и группе молодняка 0–2 мес. за время учётного периода эксперимента составила 103200 рублей.

Итак, в ходе эксперимента продолжительностью более 5 мес. было доказано, что комплексное применение Гермивита, Витадаптина, Гувитана-С для профилактики нарушений обмена веществ у коров в сухостойный период оправдано с точки зрения решения некоторых ветеринарных вопросов и экономически целесообразно.

1.15. Патогенез инфекционного ринотрахеита КРС крупного рогатого скота

Изучение патогенеза вирусных инфекций, в том числе и ИРТ КРС, показало, что могут быть различные формы взаимодействия вируса с организмом хозяина в зависимости от продолжительности пребывания возбудителя в последнем.

Во-первых, в связи с непродолжительным присутствием вируса в организме инфекционный процесс может протекать либо в острой, либо в инаппарантной форме. Второй тип взаимодействия обусловлен длительной персистенцией вируса в организме и проявляется тремя основными формами инфекции: латентной (бессимптомная персистенция возбудителя, при которой нарушается полный цикл репродукции вируса и он находится в клетках хозяина в виде субвирусных структур), либо хронической (персистенция вируса манифестируется клинической симптоматикой заболевания в течение длительного времени). Репродукция герпесвирусов в чувствительных клетках – сложный процесс, протекающий с участием многих вирионных, клеточных, вирусиндуцируемых и вирусмодифицированных энзимов.

Основными этапами развития герпетической инфекции являются: первичная инфекция кожи и слизистых, “колонизация” и острая инфекция ганглиев с последующим установлением латентности, когда только вирусная ДНК, находящаяся в ядрах нейронов, свидетельствует о наличии инфекции. Обнаружение вируса ИРТ КРС в ганглиях животных, перенесших в прошлом инфекцию, говорит о реактивации ИРТ КРС, который может протекать бессимптомно, так и с развитием поражений слизистых.

Согласно статистической гипотезе, вирус герпеса находится в клетках паравертебрального сенсорного ганглия в интегрированном или свободном непродуктивном состоянии. Под влиянием “пускового фактора” вирус активируется и перемещается из ганглия по аксону периферического нерва в эпителиальные клетки, где реплицируется. Предполагается, что этому во многом способствуют восприимчивость клеток и ослабление иммунологического контроля.

Первичное инфицирование вирусом ИРТ КРС вызывает латентную инфекцию спинальных и церебральных ганглиев, куда вирус попадает из входных ворот инфекции эндоневрально, периневрально, интрааксонально или по шванновским клеткам, и персистирует в нервных ганглиях пожизненно. Помимо нейрогенного пути распространения герпетической инфекции, большое значение имеет гематогенный путь её распространения в результате выраженного эритропизма ИРТ КРС, вследствие которого происходит заражение новых клеток. Кроме того, вирус ИРТ КРС тесно взаимодействует с лейкоцитами и тромбоцитами. При этом наблюдаются грубые повреждения хромосом и большие скопления антигена ИРТ КРС в лейкоцитах.

Генетические аномалии – это морфофункциональные нарушения в организме животных, возникающие в результате генных и хромосомных мутаций. Генные мутации могут нарушать морфогенез органов и тканей на разных этапах онтогенеза, отсюда столь широкий спектр врождённых аномалий, связанных с изменением молекулы ДНК. Изменения числа хромосом в клетках или их структуры приводят обычно к прекращению развития эмбриона или рождению особей с тяжёлыми пороками развития, нарушению у животных воспроизводительной функции.


  • Страницы:
    1, 2, 3, 4, 5