? эффективность веществ, введенных безыгольным способом, не уступает, а иногда превосходит их активность при игольном введении;
? уменьшение объема и дозы применяемого препарата при сохранении терапевтического эффекта;
? ? все жидкие биологические вещества, предназначенные для введения через иглу, пригодны для безыгольного способа применения;
? сохранение стерильности инъецируемого препарата;
? практически исключена возможность перезаражения прививаемых животных;
? высокая производительность, надежность и удобство введения препарата, по сравнению с другими методами иммунизации;
? экономичность способа.
Недостатки безыгольного введения:
? инъектор невозможно использовать для внутривенных инъекций;
? инъектор требует специального ухода;
? при работе с ним необходима специальная подготовка и строгое соблюдение правил эксплуатации (несрблюдение последних может привести к осложнениям, например порезам кожи).
На основании вышеперечисленных особенностей можно сделать вывод, что безыгольный способ является самостоятельным путем введения лекарственных препаратов в организм. Как один из способов массового ведения лекарственных и вакцинных препаратов его широко изучали в разных областях практического здравоохранения в 1960–1980 годах.
В ветеринарии интерес к безыгольному методу вакцинации как компоненту общей системы эпизоотологческих мероприятий повысился в середине 90-х годов.
Возможность, целесообразность и условия применения безыгольных инъекторв для массовой иммунизации животных показаны в работах последних лет.
Есть данные о том, что при применении ассоциированных вакцинных препаратов целесообразно снижать дозу вакцин в 5-10 раз.
В связи с указанным вакциной Комбовак вакцинировали 450 глубокостельных коров и 428 телят; Комбовак-Р – вакцинировали 479 глубокостельных коров и 439 телят; Комбовак и эмульгированная вакцинапротив пастереллеза КРС, буйволов и овец – 480 глубокостельных коров и 520 телят соответственно. Содержание сывороточных вирусоспецифических антител определяли у животных всех опытных групп перед каждым введением вакцины и через 21–30 дней после второй вакцинации.
Были подобраны 3 группы коров 2–3 летнего возраста, находящихся в одинаковых условиях содержания. Первая группа животных: вакцинировали инактивированной комбинированной вакциной “Комбовак” против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи. Коровам второй группы применили вакцину “Комбовак-Р” инактивированная комбинированная против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят, пастерелеза (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи. Коров третьей группы иммунизировали вакциной “Комбовак” против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 0,4 мл внутрикожно в область средней трети шеи и “Эмульгированной вакциной против пастереллеза КРС, буйволов и овец” (ФГУП Армавирская биофабрика, Краснодарский край), двукратно с интервалом 10–14 дней в дозе 3 мл подкожно в область средней трети шеи.
Напряженность посвакцинального иммунитета оценивалась исследованием сыворотки крови в реакции нейтрализации (РН), реакции торможения гемагглютинации (РТГА), реакции агглютинации (РА) с антигенами ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллеза. Исследование проводили через 14 дней после первого и второго введения вакцин. Интервал между последующими исследованиями составлял 14 дней и далее – 1 месяц.
Постановку и учет реакции проводили по стандартной методике, титры антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС выражали в обратных величинах. Относительное содержание вирусоспецифических антител в исследуемых пробах международных единицах по отношению к положительному контролю. Результаты обрабатывали статистически общепринятыми методами.
Предварительно провели эпизоотологические и серологические обследования животных конкретных хозяйств. Полученные данные свидетельствовали о широкой циркуляции вирусов в стадах крупного рогатого скота. Так у 61,6 % животных обнаружили антитела к вирусу ИРТ КРС, у 27,2 % – к вирусу ПГ-3 КРС и 72,1 % к вирусу ВД-БС КРС. Во всех четырех обследованных хозяйствах у 27,0-59,0 % животных выявили нейтрализующие антитела к двум и более вирусам, а также обнаружили антитела к пастереллезу. Перед проведением опытов заболеваемость телят респираторными болезнями в среднем по хозяйствам за год составляла – 43,0-71,0 % от общего количества полученных телят, гибель и выбраковка – 9,2 и 7,9 % соответственно. В каждом хозяйстве опыты проводили на фермах с наиболее высоким процентом заболеваемости, гибели и выбраковки молодняка.
Вакциной Комбовак вакцинировали 450 глубокостельных коров и 428 телят; Комбовак-Р – вакцинировали 479 глубокостельных коров и 439 телят; Комбовак и эмульгированная вакцинапротив пастереллеза КРС, буйволов и овец – 480 глубокостельных коров и 520 телят соответственно.
Содержание сывороточных вирусоспецифических антител определяли у животных всех опытных групп перед каждым введением вакцины и через 21–30 дней после второй вакцинации (табл. 9-10).
Таблица 9 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови коров до вакцинации
Таблица 10 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови коров к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 после вакцинации вакцинами “Комбовак”, “Комбовак-Р”
Как видно из таблицы все прививаемые коровы до вакцинации имели низкий уровень гуморальных антител к ИРТ – 2,7±0,18, ВД-БС – 2,5±0,16, ПГ-3 – 4,7±0,32, пастереллам 1,7±0,16, что говорит о их возможности инфицирования возбудителями острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота.
У иммунизированных животных отмечаем сероконверсию по всем компонентам вакцин через 14–21 день после введения (разница достоверна при Р < 0.05).
Среднестатистический титр антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу составил 6,8±0,20, 7,1±0,11, 9,8±0,17, 7,5±0,26 lg2 соответственно.
У телят рожденных от привитых коров, определяли уровень гуморальных антител в возрасте 10–28 дней, а затем вводили в хозяйствах неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС вакцину Комбовак; в хозяйствах неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастерллезу вакцину Комбовак-Р, телятам в возрасте 28–30 дней
У телят в возрасте 10–28 дней средний титр антител в сыворотке крови к вирусу ИРТ КРС составил 3,37±0,27, к вирусу ВД-БС КРС – 3,01±0,21, к вирусу ПГ-3 КРС – 1,65±0,12, пастереллезу – 1,04±0,13 lg2 (табл. 11–12).
Таблица 11 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов в пробах сыворотки крови телят, рожденных от привитых коров к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу до вакцинации в возрасте 10–28 дней
У телят в возрасте 10–28 дней средний титр антител в сыворотке крови к вирусу ИРТ КРС составил 3,37±0,27, к вирусу ВД-БС КРС – 3,01±0,21, к вирусу ПГ-3 КРС – 1,65±0,12, пастереллезу – 1,04±0,13 lg2. В возрасте 28–30 дней вводили вакцину Комбовак или Комбовак-Р, в зависимости от неблагополучия хозяйства по ОРЗ КРС. У 21,0 % иммунизированных телят в возрасте 28–30 дней проявлялась поствакцинальная реакция в виде повышения температуры тела до 40?С, гиперемии конъюнктивы, слезотечения. Указанные признаки исчезали в течение 5–7 дней. После иммунизации у телят в возрасте 28–30 дней уровень антител и антигемаглютининов ко всем четырем антигенам повышался.
Таблица 12 – Средние титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютининов у телят к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу после введения вакцин Комбовак и Комбовак-Р
Из представленных данных видно, что в момент введения инактивированных вакцин Комбовак и Комбовак-Р у телят в возрасте 28–30 дней титры вируснейтрализующих антител и антигемаглютенинов к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу составили 3,31±0,2, 3,02±0,19, 1,6±0,1, 1,9±0,2; через 30 дней после вакцинации: 4,2±0,27, 3,8±0,27, 2,8±0,28, 2,7±0,27 соответственно; через 60 дней к вирусу ИРТ КРС 4,8±0,17, ВД-БС КРС – 4,1±016, ПГ-3 КРС – 5,8±0,21, пастереллезу – 3,2±0,1; через 90 дней 4,5±0,25, 3,8±0,21, 5,6±0,17, 2,9±0,21 соответственно; через 120 дней – 3,9±0,16, 3,6±0,17, 4,1±0,21, 2,7±06; через 150 дней – 3,3±0,21, 3,1±0,18, 3,8±0,17, 2,5±0,14 соответственно. Разница во всех случаях достоверна (Р < 0,05).
Выявленные титры антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС, пастереллезу сохранялись на постоянном уровне в течение 3-х месяцев (до 3-х месяцев), затем понижались, что говорит о необходимости проведения вакцинопрофилактики с 3-х месячного возраста телят против ОРЗ КРС.
Исследование проб сыворотки крови коров и телят до 30-ти дневного возраста из хозяйств, неблагополучных по ОРЗ КРС, где вакцинация проводилась вакциной Комбовак и эмульгированной вакциной против пастереллеза КРС, буйволов и овец, показала, что в среднем до 47 % из них имеют низкий титр антител к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 – 1,7±0,61, 1,5±1,41, 1,9±0,16 lg2 соответственно, а к пастереллезу в низких титрах (1,8±0,16 lg2). Исследование молозива отелившихся коров показало, что уровень иммуноглобулинов основных классов в нем значительно ниже нормы. Что обуславливает его низкую защитную функцию. Телята без колостральных антител или содержащие их в низких титрах менее защищены от контакта с полевым вирусом.
В связи с уменьшением уровня антител каждые три месяца, в возрасте 6 месяцев телят повторно иммунизировали вакциной Комбовак или Комбовак-Р, при этом уровень антител к четырем антителам контролировали в течение 150 дней. Сроки последующей иммунизации были определены перед случным периодом в возрасте 12–14 месяцев с использованием вакцин Комбовак и Комбовак-Р, однократно. При этом у 100 % привитых животных отмечали напряженный иммунитет по всем четырем антителам в течение 6 месяцев (срок наблюдения). Перед отелом нетелей иммунизировали по схеме, разработанной для коров.
При внедрении комплексной системы оздоровительных мероприятий объем диагностических исследований с целью определения напряженности иммунитета у привитых животных составил по годам: 2004 год – 2721 проба сыворотки крови, при этом средний титр антител к вирусу ИРТ составил 2,07±0,04, ВД-БС – 3,2±0,02, ПГ-3 – 3,4±0,01 lg2; в 2005 году – исследовали 1786 проб сыворотки крови, выявили титры антител в среднем к вирусу ИРТ – 3,2±0,03, ВД-БС – 3,5±0,01, ПГ-3 – 3,9±0,02 lg2. В 2006 году исследовали 2301 пробу сыворотки крови, при установленном уровне антител к вирусу ИРТ – 4,2±0,04, ВД-БС – 3,9±0,01, ПГ-3 – 4,2±0,04, пастереллезу – 3,9±0,01 lg2. В 2007 году – 492 пробы сыворотки крови при уровне антител к вирусу ИРТ – 5,2±0,01, ВД-БС – 5,7±0,04, ПГ-3 – 64,2±0,01, пастереллезу – 4,9±0,02 lg2. Разница между средними величинами титров вируснейтрализующих и антигемаглютинирующих антител по годам достоверна. Титры вируснейтрализующих антител у животных из хозяйств, где не использовалась данная система вакцинации, в среднем, не превышают 1,0 ±0,02 lg2.
При анализе картографических данных видно, что уровень титров вируснейтрализующих антител у животных к вирусам ИРТ, ВД-БС увеличивается к 2007 году, в районах Свердловской области, где внедрена схема вакцинации и достигает 80-100 % по сравнению с 2004 годом.
Таким образом, вакцинация животных, проводимая в течение трех лет, привела к увеличению количества телят, имеющих титры антител к вирусу ИРТ КРС – 99,8 %, ВД-БС КРС – 97,1 %, ПГ-3 КРС – 100 %, что на 11,3 %, 28,2 % и 10 %, соответственно, выше, чем в 2004 году.
Количество телят, не имеющих антитела к этим вирусам, составило соответственно 1; 2; 2,8; и 0 %. Разница между средними значениями титров специфических антител была достоверной при Р < 0,05.
Серологические исследования, проведенные в 2004–2007 гг. в 35 хозяйствах области, где была внедрена система специфической профилактики, показали, что после введения телятам, рожденным от иммунизированных матерей, инактивированными вакцинами у них вырабатывается достаточно напряженный гуморальный (от 65 до 100 %) и напряженный гуморальный иммунитет. Титры вируснейтрализующих антител в течение срока наблюдения достоверно повышались от 1,78 до 5,3±0,74 lg2 и выше.
Практически во всех обследованных хозяйствах у привитых животных отмечается достоверная сероконверсия (Р < 0,05 между значениями титров антител в первый и последующие годы вакцинации).
На основании полученных результатов было сделано предположение, что усовершенствование на этой основе схемы специфической профилактики ОРЗ КРС, обеспечивает формирование напряженного иммунитета у крупного рогатого скота при вакцинации с учетом возраста.
При этом разница между средними значениями титров специфических антител была достоверной при Р < 0,05.
В таблице 13 представлены данные о наличии сероконверсии у иммунизированных телят после внедрения усовершенствованной схемы вакцинации в течение 2005–2006 гг. (по данным 9 хозяйств). Установлено, что после введения телятам, рожденным от иммунизированных коров-матерей, инактивированными вакцинами Комбовак и Комбовак-Р у них вырабатывается достаточно напряженный гуморальный иммунитет.
Таким образом, усовершенствование схемы вакцинации против ОРЗ КРС оказались достаточно эффективными (табл. 13–15) (Приложения)
1.14.2. Повышение эффективности средств специфической профилактики острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота с помощью иммунокорректоров растительного происхождения
Один из основных критериев оценки экономической эффективности применения средств специфической профилактики инфекционных болезней наряду с напряженностью иммунитета, отсутствием заболеваемости и падежа – это расход препарата. В практике борьбы с ОРЗ крупного рогатого скота ситуация, при которой приходится вводить дополнительные вакцинациив связи с низкими титрами антител или их полным отсутствием у отдельных животных, возникает довольно часто. Причиной тому сбои в работе отдельных элементов иммунной системы.
Учитывая это целью наших исследований явилось изучение эффективности применения вакцины инактивированной комбинированной против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота– и коронавирусной болезни телят (“Комбовак”) в сочетании с иммуномодулирующими средствами с последующей оценкой иммунного статуса привитых животных.
Исследования проведены на 180 быках черно-пестрой породы 6-8-месячного возраста, разделенных на три равные группы в условиях сельскохозяйственного предприятия Челябинской области, неблагополучного по ОРВИ крупного рогатого скота.
Для иммунизации животных использовали вакцину “Комбовак” согласно наставлению по её применению в сочетании с растительными иммуномодуляторами Видор, Витадаптин. Оптимальную дозу иммуномодуляторов Видор 5,0 см3/гол подкожно, Витадаптин 10,0 см3/гол внутримышечно за 24 часа до введения вакцины “Комбовак”.
У подопытных животных исследовали кровь до проведения вакцинации и в последующем через 14 и 28 суток. Определение количества эритроцитов и лейкоцитов осуществляли общепринятыми методами. Специфические антитела против ИРТ, парагриппа-3, вирусной диареи определяли РНГА, ИФА, РТГА. Результаты гематологических исследований представлены в табл. 16.
Таблица 13 – Сероконверсия к вирусам ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 КРС у телят после иммунизации вакцинами Комбовак и Комбовак-Р в хозяйствах Свердловской области
Таблица 14 – Методологическая схема № 1 специальных профилактических мероприятий по инфекционному ринотрахеиту, вирусной диарее – болезни слизистых, парагриппу типа 3, хламидиозу крупного рогатого скота
Таблица 15 – Схема № 2 специальных профилактических мероприятий по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, хламидиозу, пастереллезу КРС
Таблица 16 – Гематологические показатели опытных животных
Результаты, представленные в таблице 1 свидетельствуют, что у животных, привитых вакциной “Комбовак” в сочетании с иммуномодуляторами изменения общего количества эритроцитов в крови были незначительными. В то же время, количество лейкоцитов у быков, иммунизированных одной вакциной, к 28 дню опыта уменьшилось на 12,8 %. У животных иммунизированных вакциной “Комбовак” в сочетании с препаратами Видор, Витадаптин на 28 сутки после вакцинации в крови регистрировали достоверное увеличение количества лейкоцитов 21,31 и 22,95 % соответственно.
Анализ результатов серологических исследований показал, что специфические антитела против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи после иммунизации вакциной “Комбовак” в сочетании с препаратами Видор, Витадаптин выявляются на 14 сутки и достигали максимальных значений к 28 дню (рис. 5).
Рисунок 5 – Средний титр вируснейтрализующих антител в пробах сыворотки крови быков, lg2
При этом уровень антител у животных опытных групп варьировал: при ИРТ – от 3,10±0,19 до 4,20±0,14; ПГ-3 – 1,61±0,14 – 4,68±1,14; ВД-БС – 2,18±0,31 – 2,63±0,18 и в контроле – от 3,1±0,13 – 2,21±0,14; 2,64±0,11 – 1,61±0,13; 2,16±0,14 – 2,01±0,14 lg2 соответственно.
Таким образом, результаты проведенных исследований показали, что вакцинация животных вакциной “Комбовак” в комплексе с применением иммуностимулирующими препаратов Видор и Витадаптин сопровождается значительным повышением общего количества лейкоцитов, более интенсивной выработкой специфических антител по сравнению с показателями у животных, иммунизированных одной вакциной.
1.14.3. Комплексная система профилактических мероприятий при ОРЗ крупного рогатого скота
На основании анализа и результатов эпизоотологической ситуации на Урале, определения эффективности специфической профилактики была разработана комплексная система противоэпизоотических мероприятий (табл. 17).
Комплексная система оздоровительных и профилактических мероприятий при ОРЗ КРС включает проведение организационных и специальных мероприятий, направленных на ликвидацию респираторных инфекций среди поголовья крупного рогатого скота. Основные звенья ее – своевременная вакцинация, соблюдение ветеринарных и санитарных мероприятий, проведение аэрозольной дезинфекции, введения молодняку сыворотки реконвалесцентов крупного рогатого скота и сыворотки против паслереллеза. Внедрение системы обеспечило снижение заболеваемости в хозяйствах Свердловской области неблагополучных по ИРТ, ВД-БС, ПГ-3, пастереллеза КРС. Разработанная ранее система мероприятий была ориентирована на острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота и хламидиоз. В настоящее время в Уральском регионе существует проблема смешанных вирусных и бактериальных инфекций крупного рогатого скота.
Для вакцинации против острых респираторных вирусных инфекций в хозяйствах благополучных по пастереллезу крупного рогатого скота рекомендовали применить инактивированную комбинированную вакцину “Комбовак” против ИРТ, ВД, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят (НПО “Нарвак”, г. Москва); в хозяйствах, имеющих неблагополучие по пастереллезу применять “Комбовак-Р” – инактивированную комбинированную вакцину против ИРТ, ВД, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни, пастереллеза телят (НПО “Нарвак”, г. Москва). Вакцинацию животных проводить внутрикожным методом, строго в указанные возрастные периоды. Обязательным условие оздоровительных мероприятий остается исследование напряженности иммунитета к ОРВИ КРС, пастереллезу каждые 30 дней у телят до достижения возраста 6 месяцев, коров и нетелей исследовать на напряженность иммунитета 2 раза в год.
Контроль напряженности иммунитета в стаде дает возможность оценивать эффективность проводимой вакцинации и своевременной корректировки мер, направленных на оздоровление хозяйств от острых респираторных заболеваний. Также необходимым условием эффективности профилактических мероприятий является соблюдение ветеринарно-санитарных мероприятий.
1.14.4. Мероприятия по повышению резистентности, оздоровлению сухостойных коров с целью получения крепкого приплода и сокращения частоты послеродовых осложнений
Повышение продуктивности животных и эффективности различных схем профилактики инфекционных болезней невозможно без правильного кормления скота. Зачастую, используемые рационы дефицитны по витаминам, имеют избыток белка, низкое качество в результате чего происходят серьёзные отклонения в обмене веществ. Нарушения обмена веществ препятствуют реализации генетического потенциала, снижают воспроизводительную функцию, сокращают сроки хозяйственного использования коров и т. д.
Таблица 17
Система оздоровительных и профилактических мероприятий при ОРЗ крупного рогатого скота
Профилактические мероприятия по коррекции обмена веществ у крупного рогатого скота должны проводиться, в первую очередь, для коров в сухостойный период. С помощью правильно подобранных лекарственных средств и кормовых добавок можно существенно повлиять на качество приплода и надои в последующую лактацию, предотвратить нарушения родовой деятельности, возникновение послеродовых осложнений, повысить оплодотворяемость коров, получить крепкий, жизнеспособный приплод, способный противовстоять влиянию неблагоприятных факторов окружающей среды.
В последние годы для нормализации обменных процессов в организме животных большое внимание отводится лекарственным средствам и кормовым добавкам природного происхождения, обладающим высокой биологической доступностью и усвояемостью. Немаловажным является их экологичность, отсутствие каких-либо побочных эффектов и привыкания.
Для внедрения в практику нами была разработана профилактическая схема комплексного применения Гермивита, Витадаптина (ЗАО “Розовый лотос”) и Гувитана-С (ООО “Ариадна”).
С целью оценки эффективности профилактической схемы на обмен веществ и качество получаемого от него приплода в условиях ООО “Совхоз Береговой”, Каслинского района, Челябинской области был проведён производственный эксперимент. Для этого среди сухостойных коров были сформированы две группы – опытная и контрольная (по 140 голов в каждой). Предварительно было проведено клиническое обследование животных.
Схема дачи Гермивита, Гувитана-С и обработок сухостойных коров Витадаптином представлена в таблице 18.
Таблица 18 – Схема производственного эксперимента
Все животные находились в равных условиях (влажность, загазованность, температурный режим, уход) и получали одинаковые корма.
Наблюдение за животными обеих групп вели с первого дня после перевода их в группу сухостоя до момента плодотворного осеменения. При этом учитывались общее состояние животных, частота случаев возникновения послеродовых осложнений, гинекологических заболеваний, масса новорожденных телят, их заболеваемость и сохранность в течение первых 30 дней жизни. Кроме того, проведено биохимическое исследование крови. Её брали у 10 коров каждой группы дважды – через 30 дней от начала опыта и за 3–5 дней до отёла. Полученные результаты представлены на рисунке 6 и в таблицах 19–20.
Анализ результатов биохимического исследования сыворотки крови показывает, что дача сухостойным коровам Гермивита, раствора Гувитана-С, обработка животных Витадаптином способствует активизации деятельности всех систем организма и стимулирует обмен веществ. Свидетельством тому являются рост (опыт в сравнении с контролем) содержания каротина, кальция, фосфора, сахара, альбумина, резервной щелочности в среднем на 51,36; 14,56; 14,98; 13,38; 21,75 и 14,64 % соответственно. Понижение содержания в сыворотке общего белка (2,27 %) на фоне увеличения концентрации альбуминов (21,75 %) клинически можно рассматривать, как следствие нормализации деятельности печени, более качественного использования протеина корма.
Рис. 6 – Результаты биохимического исследования крови
Наблюдениями за поведением животных установлено, что коровы опытной группы были более активными (во время прогулок), лучше поедали задаваемые корма. Частота возникновения послеродовых осложнений и гинекологических заболеваний них была в три раза ниже, чем у коров группы контроля. При этом, средняя масса телят при рождении у матерей опытной группы была выше (в среднем на 10,33±0,45 кг).
Таблица 19 – Частота возникновения послеродовых осложнений (%) и величина последующего сервис-периода (дн.)
Таблица 20 – Масса телят при рождении от матерей опытной и контрольной групп, их заболеваемость и сохранность в течение 30 дней
Последующее наблюдение за животными, участвующими в эксперименте установлено, что применение Гермивита, Гувитана-С и Витадаптина способствует сокращению продолжительности сервис-периода. У коров опытной группы он был на 41,49 дня короче, чем в контроле.
Различий в сохранности телят до 30-дневного возраста от матерей обеих групп не установлено. Но как показали данные ежемесячного взвешивания молодняка, при равных условиях, величина среднесуточного прироста массы тела у телят, полученных от животных опытной группы, была на 70 г выше, чем в контроле. Кроме того, установлено, что после вакцинации против ОРВИ, число телят от матерей, прокормленных Гермивитом, и обработанных Витадаптином, нуждающихся в тертьей, дополнительной иммунизации по причине недостаточной напряженности иммунитета, сократилось на 28,20 %.
В результате снижения частоты случаев возникновения послеродовых осложнений, гинекологических заболеваний и заболеваемости новорожденных телят сократились затраты на лечение. Экономия только за счёт снижения расхода лекарственных средств по родильному отделению, профилакторию и группе молодняка 0–2 мес. за время учётного периода эксперимента составила 103200 рублей.
Итак, в ходе эксперимента продолжительностью более 5 мес. было доказано, что комплексное применение Гермивита, Витадаптина, Гувитана-С для профилактики нарушений обмена веществ у коров в сухостойный период оправдано с точки зрения решения некоторых ветеринарных вопросов и экономически целесообразно.
1.15. Патогенез инфекционного ринотрахеита КРС крупного рогатого скота
Изучение патогенеза вирусных инфекций, в том числе и ИРТ КРС, показало, что могут быть различные формы взаимодействия вируса с организмом хозяина в зависимости от продолжительности пребывания возбудителя в последнем.
Во-первых, в связи с непродолжительным присутствием вируса в организме инфекционный процесс может протекать либо в острой, либо в инаппарантной форме. Второй тип взаимодействия обусловлен длительной персистенцией вируса в организме и проявляется тремя основными формами инфекции: латентной (бессимптомная персистенция возбудителя, при которой нарушается полный цикл репродукции вируса и он находится в клетках хозяина в виде субвирусных структур), либо хронической (персистенция вируса манифестируется клинической симптоматикой заболевания в течение длительного времени). Репродукция герпесвирусов в чувствительных клетках – сложный процесс, протекающий с участием многих вирионных, клеточных, вирусиндуцируемых и вирусмодифицированных энзимов.
Основными этапами развития герпетической инфекции являются: первичная инфекция кожи и слизистых, “колонизация” и острая инфекция ганглиев с последующим установлением латентности, когда только вирусная ДНК, находящаяся в ядрах нейронов, свидетельствует о наличии инфекции. Обнаружение вируса ИРТ КРС в ганглиях животных, перенесших в прошлом инфекцию, говорит о реактивации ИРТ КРС, который может протекать бессимптомно, так и с развитием поражений слизистых.
Согласно статистической гипотезе, вирус герпеса находится в клетках паравертебрального сенсорного ганглия в интегрированном или свободном непродуктивном состоянии. Под влиянием “пускового фактора” вирус активируется и перемещается из ганглия по аксону периферического нерва в эпителиальные клетки, где реплицируется. Предполагается, что этому во многом способствуют восприимчивость клеток и ослабление иммунологического контроля.
Первичное инфицирование вирусом ИРТ КРС вызывает латентную инфекцию спинальных и церебральных ганглиев, куда вирус попадает из входных ворот инфекции эндоневрально, периневрально, интрааксонально или по шванновским клеткам, и персистирует в нервных ганглиях пожизненно. Помимо нейрогенного пути распространения герпетической инфекции, большое значение имеет гематогенный путь её распространения в результате выраженного эритропизма ИРТ КРС, вследствие которого происходит заражение новых клеток. Кроме того, вирус ИРТ КРС тесно взаимодействует с лейкоцитами и тромбоцитами. При этом наблюдаются грубые повреждения хромосом и большие скопления антигена ИРТ КРС в лейкоцитах.
Генетические аномалии – это морфофункциональные нарушения в организме животных, возникающие в результате генных и хромосомных мутаций. Генные мутации могут нарушать морфогенез органов и тканей на разных этапах онтогенеза, отсюда столь широкий спектр врождённых аномалий, связанных с изменением молекулы ДНК. Изменения числа хромосом в клетках или их структуры приводят обычно к прекращению развития эмбриона или рождению особей с тяжёлыми пороками развития, нарушению у животных воспроизводительной функции.